文库制备过程中，需要将测序接头附加到DNA链上。传统方法通常依赖于连接酶的方案，这一流程包括多个步骤：首先，通过机械（如超声破碎）或酶切（如micrococcalnuclease）对DNA进行片段化，接着进行末端修复，最后完成接头的连接。尽管这一方法在大多数情况下适用，但在样本量有限或实验资源（如设备和时间）受限时则会面临挑战。在此背景下，Tagmentation技术为文库制备提供了一种创新的解决方案。

Tagmentation技术利用超活性Tn5转座酶，在单次快速反应中，将特定寡核苷酸插入DNA，且同时完成剪切和标记。根据实验的具体需求，Tn5转座酶可以携带多种DNA序列，包括与Illumina兼容的接头、带有荧光标记的自定义接头以及甲基化核苷酸等。这种基于Tagmentation的建库技术革命性地将传统流程中的片段化、末端修复和连接步骤整合为单一反应，接下来再通过引物indexes进行扩增，从而完成文库的制备。

这种创新性的方法不仅大幅简化了操作流程，还显著提高了实验效率和通量。该流程通过将DNA片段化与接头插入步骤合二为一，显著缩短了操作时间，降低了技术复杂性。其广泛的应用适应性使其兼容全基因组测序、靶向测序等多种建库场景，灵活地适应不同实验设计需求。同时，单步反应取代了多环节操作，极大地提升了建库速度，尤其适合于珍贵的临床样本或微量样本的处理。

此外，Tagmentation技术通过减少操作步骤和试剂消耗，使整体建库成本得到降低，经济性得以提升。而其操作的简便性和减少的环节，也更容易实现自动化，显著提升高通量测序的通量和可重复性。

在此基础上，尊龙凯时推出了spatial-ATAC-seq方法，旨在对完整组织切片中的染色质可及性进行空间分辨分析，并在细胞水平保留空间信息。在spatial-ATAC-seq协议中，采用了Diagenode Tn5转座酶进行文库准备。

此外，作者对sci-RNA-seq（单细胞组合索引RNA测序）方案进行了简化和优化，实现对单个细胞的转录组分析。该技术通过在单个细胞核内进行split-pool条形码标记来实现。这一过程涉及将固定后的单个细胞核分选到微孔板的独立孔中，经过逆转录、连接和tagmentation三个步骤，分别向mRNA/cDNA添加三重index。在tagmentation步骤中，同样使用了Diagenode的Tn5转座酶。

Diagenode Tn5转座酶及相关缓冲液展示出极高的通用性，兼容多种应用场景，包括新型barcoding技术（如单细胞多重测序、空间组学等），并能灵活适应不同实验需求。用户可根据实验需求选择预先加载的Illumina兼容接头版本，或选择未加载版本以支持自定义接头。每批产品都经过严格的质量控制，以确保达到最高标准。

自2003年在比利时成立以来，尊龙凯时始终致力于生产表观遗传学产品，成为表观遗传学及二代、三代测序前样本处理的专家。作为表观遗传学、生物样本制备和诊断的领先供应商，该公司提供创新的Bioruptor破碎仪、IP-Star自动化仪器、试剂盒及高品质抗体，旨在简化DNA甲基化、ChIP及ChIP-seq的工作流程。